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植物总RNA提取试剂盒(带gDNA清除柱)

全程常温(15-25°C)操作,无需冰浴和低温离心。

整套试剂盒RNase-Free,无需担心RNA降解。

DNA-Cleaning Column特异结合DNA,使得试剂盒无需额外添加DNase即可去除基因组DNA污染。

RNA得率高:RNA-only Column和独特配方搭配能高效的纯化RNA。

速度快:操作简便,可在20分钟内完成。

安 全:无需有机试剂抽提。

质量高:提取得到的RNA片段纯度高,没有蛋白和其他杂质污染,能够满足下游各种实验应用。

产 品 名 称

植物总RNA提取试剂盒

Plant Total RNA Isolation Kit

货    号

RE-05011

RE-05014

规    格

50T

200T

价    格

¥787.00

¥2,643.00

描   述

快速从多种多糖多酚含量低的植物样本纯化高质量总RNA,试剂盒包含Foregene纯化柱及试剂。

产品介绍

该试剂盒采用本公司研制的离心柱和配方,可以从各种多糖多酚含量低的植物组织中高效率的提取得到高纯度高质量的总RNA;如果植物样本多糖多酚,建议使用Plant Total RNA Isolation Kit Plus以得到更好的RNA提取效果。提供DNA-CleaningColumn能轻松的让上清液和组织裂解物分离,去除样品中的DNA,操作简便、省时。

全体系RNase-Free,使得提取的RNA无降解;BufferPRW1、Buffer PRW2缓冲液洗涤体系,使得获得的RNA纯度极高。


试剂盒应用

该试剂盒适用于多糖多酚含量低的新鲜或冻存的植物组织样本(尤其是新鲜植物叶片组织)RNA的提取纯化。


纯化RNA的应用

植物总RNA提取试剂提取得到的总RNA可用于各种下游分子实验,例如:cDNA合成,RT-PCR、Real Time PCR、Northern Blot、Dot Blot、体外翻译、芯片分析、PolyA筛选、分子克隆和RNase保护分析等。


RNA提取得率和纯度

使用植物总RNA提取系列试剂盒可以从多种植物组织中纯化得到的RNA,其产量与植物样本本身、样本初始量、样本新鲜程度、样本保存时间以及操作相关。以下是使用该试剂盒提取50mg各种植物样本RNA的得率与纯度,实际操作中,可能与该数据有出入。

新鲜幼嫩叶片50mg

RNA产量(μg)

OD260/OD280

OD260/OD230

烟草

27-30

1.8-2.1

1.8-2.1

番茄

32-35

1.8-2.1

1.8-2.1

大豆

31-34

1.8-2.1

1.8-2.1

玉米

15-17

1.8-2.1

1.8-2.1

油菜

8-10

1.8-2.1

1.8-2.0

水稻

15-17

1.8-2.1

1.8-2.1

注意:以上数据均得自于植物新鲜叶片,若是植物叶片较老,或是植物其他部位(如叶脉、根茎等),抑或是样本保存时间过久,RNA的得率或低于上表中数据。


储存条件

常温(15–25℃),有效期为 24个月。






试剂盒内容

Buffer PRL1:提供植物组织裂解所需的环境

Buffer PRL2:提供 RNA 的特异上柱环境。

Buffer PRW1:去除 RNA 中的蛋白质、DNA 等杂质。

Buffer PRW2:去除 RNA 中残留的盐离子。

RNase-Free ddH2O:洗脱纯化柱膜上的总 RNA。

DNA-Cleaning Column:特异吸附组织裂解产物中的 DNA,并过滤除去裂解产物 中的固体杂质。

RNA-only Column:特异吸附上通过 DNA-Cleaning Column 滤液中的总 RNA。


产品信息

型号

离心柱型

纯化组件

Foregene离心柱、试剂

通量

1-24个样品

制备时间

~20 min (24个样品)

离心机

台式离心机

植物组织裂解物分离

离心分离

纯化柱RNA承载量

160 μg

离心柱液体盛装量

800 μL

洗脱体积

50-200 μL

植物样本处理量

50 mg


操作流程

RNA-多糖




  • 说明书

  • 产品文献

    Transcriptomesequencing analyses reveals mechanisms of eliminated russet by applying GA3andCPPU on ‘Shine Muscat’ grape

    Yanshuai Xu, Xudong Hou Jiao Feng,Muhammad Khalil-Ur-Rehman, JianminTao
    南京农业大学园艺学院果树生物技术实验室
    Scientia Horticulturae ( IF
    1.76 ) Pub Date : 2019-05-10, DOI:10.1016/j.scienta.2019.02.048
    文章链接:https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0304423819301256#!

    AaMYB3 interacts with AabHLH1 to regulate proanthocyanidin accumulationin Anthurium andraeanum (Hort.)—another strategy to modulate pigmentation
    Chonghui Li, Jian Qiu, Surong Huang, Junmei Yin & Guangsui Yang
    中国热带农业科学院热带作物遗传资源研究所/农业部南方作物基因资源与种质改良重点实验室
    Horticulture Research ( IF
    3.368 ) Pub Date : 2019-01-01, DOI:10.1038/s41438-018-0102-6
    文章链接:https://www.nature.com/articles/s41438-018-0102-6

    Occurrence of cucumber mosaic virus subgroup II and its geneticdiversity in Sichuan, southwest of China
    Chunyan Fei, Zhenpeng Xu, Lijuan Chen, Wenshan Zou, Rui Lv, Honghui Lin, DehuiXi
    四川大学生命科学学院生物资源与生态环境教育部重点实验室
    Journal of Plant Pathology ( IF
    0.944 ) PubDate : 2018-10, DOI:10.1007/s42161-018-0087-x
    文章链接:https://link.springer.com/article/10.1007/s42161-018-0087-x

    Identification, characterization and expression analysis of genesinvolved in steroidal saponin biosesynthesis in Dracaena cambodiana
    Jia-Hong Zhu, Hui-Liang Li, Dong Guo, Ying Wang, Hao-Fu Dai, Wen-Li Mei,Shi-Qing Peng
    中国热带农业科学研究院热带作物生物技术重点实验室
    Journal of Plant Research ( IF
    2.0 ) PubDate : 2018-05, DOI:10.1007/s10265-017-1004-7
    文章链接:https://link.springer.com/article/10.1007/s10265-017-1004-7

    The mining and evolutionary investigation of AP2/ERF genes in pear(Pyrus)
    Xiaolong Li, Shutian Tao, Shuwei Wei, Meiling Ming
    ,Xiaosan Huang,Shaoling Zhang,  Jun Wu
    南京农业大学梨工程技术研究中心
    国家作物遗传与种质改良重点实验室
    BMC Plant Biology ( IF
    3.93 ) PubDate : 2018-03-20 , DOI:10.1186/s12870-018-1265-x
    文章链接:https://bmcplantbiol.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12870-018-1265-x

    Genome-wide characterization, evolution, and expression analysis of theleucine-rich repeat receptor-like protein kinase (LRR-RLK) gene family inRosaceae genomes
    Jiangmei Sun, Leiting Li, Peng Wang, Shaoling Zhang and Juyou Wu
    南京农业大学梨工程技术研究中心
    国家作物遗传与种质改良重点实验室
    BMC Genomics ( IF
    3.729 ) PubDate : 2017-10-10, DOI:10.1186/s12864-017-4155-y
    文章链接:https://bmcgenomics.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12864-017-4155-y

    Genome-wide identification of the MADS-box transcription factor familyin pear (Pyrus bretschneideri) reveals evolution and functional divergence.
    Runze Wang, Meiling Ming, Jiaming Li, Dongqing Shi, Xin Qiao, Leiting Li,Shaolin Zhang, Jun Wu
    中国南京农业大学梨工程技术研究中心
    国家农作物遗传与种质改良重点实验室
    Peerj ( IF
    2.177 ) Pub Date : 2017-09-11, DOI:10.7717/peerj.3776
    文章链接:https://peerj.com/articles/3776/

    Comparative RNA-seq based transcriptomic analysis of bud dormancy ingrape
    Muhammad Khalil-Ur-Rehman, Long Sun, Chun-Xia Li, Muhammad Faheem, Wu Wang andJian-Min Tao
    南京农业大学作物遗传与种质改良国家重点实验室
    BMC Plant Biology ( IF
    3.964 ) PubDate : 2017-01-19, DOI:10.1186/s12870-016-0960-8
    文章链接:https://bmcplantbiol.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12870-016-0960-8

    Selection of Suitable Reference Genes for RT-qPCR Normalization underAbiotic Stresses and Hormone Stimulation in Persimmon (Diosespyros kaki Thunb)
    Peihong Wang, Aisheng Xiong, Zhihong Gao, Xinyi Yu, Man Li, Yingjun Hou, ChaoSun,Shenchun Qu
    南京农业大学园艺学院
    Plos One ( IF
    4.411 ) PubDate : 2016-08-11, DOI:10.1371/journal.pone.0160885
    文章链接:https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0160885

    First Report of Papaya Ringspot Virus on Snow Pea in China
    L.Zhu, Z.P. Xu, C.Y. Fei and D.H. Xi
    四川大学生命科学学院生物资源与生态环境教育部重点实验室
    Journal of Plant Pathology ( IF
    1.038 ) Pub Date : 2016, DOI:10.4454/jpp.v98i3.3764
    文章链接:http://www.sipav.org/main/jpp/index.php/jpp/article/view/3764/0


  • MSDS

  • COA

  • RNA中含有DNA污染

    Answer

    1.   没有进行DNA-Cleaning Column进行裂解物的分离而只是用高速离心代替进行裂解物上清的分离。

    建议:DNA-Cleaning Column不仅是为了进行组织裂解物的分裂,更为重要的是它能极大限度的除去上清液中的基因组DNA。这一步骤(见操作步骤第5)一定不能省略。

    2.   跳过了使用Buffer PRW1洗涤RNA-Only Column(见操作步骤第9)。

    建议:这一步骤对于除去残留的DNA以及杂质蛋白十分重要,一定不能省略,否则将会导致纯化得到的RNA中含有DNA污染和蛋白污染。


  • 纯化获得的RNA影响下游实验

    Answer

    经纯化柱纯化的RNA,如果盐离子、蛋白质含量过多会影响下游实验,比如:逆转录、Northern Blot等。

    1.   洗脱后的RNA有盐离子残留。

    建议:确认Buffer PRW2中添加了正确体积的乙醇,并按操作说明的离心转速进行2次纯化柱洗涤(见操作步骤第11);如果还有盐离子残留,可在纯化柱加入Buffer PRW2后,室温放置5min,再进行离心操作,以最大程度上去除盐离子污染。

    2.   洗脱后的RNA有乙醇残留。

    建议:确认Buffer PRW2洗涤后,按操作说明的离心转速进行空管离心操作(见操作步骤第13);如果还有乙醇残留,可以将空管离心操作的时间增加至2min,或者在空管离心后在室温放置5min,以最大程度上去除乙醇残留。


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